Brucella ceti -Brucella ceti

Brucella ceti
clasificación cientifica
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Género:
Especies:
B. ceti

Foster y col. 2007
Nombre binomial
Brucella ceti

Brucella ceti es un patógeno bacteriano gramnegativo de la familia Brucellaceae que causa brucelosis en cetáceos . Brucella ceti se ha encontrado en ambas clases de cetáceos, misticetos y odontocetos . La brucelosis en algunos delfines y marsopas puede provocar signos clínicos graves que incluyen abortos fetales, infertilidad masculina, neurobrucelosis, cardiopatías, lesiones óseas y cutáneas, episodios de hebras y muerte.

Brucella ceti se aisló por primera vez en 1994 cuando se descubrió un feto de delfín abortado. Sólo una pequeña parte de las personas con Brucella ceti tienen signos clínicos evidentes de brucelosis, lo que indica que muchos tienen la bacteria y permanecen asintomáticos o superan el patógeno. Los estudios serológicos han demostrado que la brucelosis de cetáceos puede estar distribuida en todo el mundo en los océanos. La ruta probable de transmisión del patógeno bacteriano en los cetáceos es a través del apareamiento o la reproducción y la lactancia. La brucelosis es una enfermedad zoonótica : la brucelosis de los mamíferos marinos puede infectar a otras especies, incluidos los seres humanos.  

Brucella spp. son gramnegativos en su morfología de tinción. Brucella spp. son cocobacilos gramnegativos pequeños, de tinción deficiente (0,5-0,7 x 0,6-1,5 µm), y se ven principalmente como células individuales

Características bacterianas

B. ceti es una bacteria aerobia gram negativa, inmóvil. Las células son cocos, cocobacilos (bastoncillos cortos) con un diámetro de 0,5 a 0,7 µm y una longitud de 0,6 a 1,5 µm. La disposición de las celdas suele ser singular con configuraciones ocasionales en pares o cadenas cortas. El crecimiento celular ocurre entre 20 y 40 grados centígrados con la temperatura óptima de 37 grados centígrados y se mejora con la presencia de sangre o suero, no se requiere CO 2 suplementario para el crecimiento celular. El rango de pH ideal está entre 6,6 y 6,7.   

Rango de host

Se ha encontrado B. ceti mediante aislamiento por PCR en 4 de 14 familias de cetáceos, pero se han aislado anticuerpos contra la bacteria en 7 familias. Dentro de estas familias, B ceti se ha cultivado o encontrado en zifios de Sowerby ( Mesoploden bidens ), ballenas piloto de aleta larga ( Globicephala melas ), ballenas minke del norte ( Balaenoptera acutorostrata ), ballena picuda de Cuvier ( Ziphius cavirostris ), delfines cara blanca del Atlántico ( Lagenorhynchus acutus ), marsopas ( Phocoena phocoena ), delfines comunes ( Delphinus delphis ), delfines de pico blanco ( Lagenorhynchus albirostris ), delfines listados ( Stenella coeruleoalba ), delfines nariz de botella ( Tursiops truncatus ) de delfines (Hector Cephalorhynchus hectori ), delfines de Maui ( Cephalorhynchus hectori maui ), narvales ( Monodon monoceros ), orcas ( Orcinus orc a) y ballenas francas australes (Eubalaena australis)  

Signos clínicos

Los síntomas más comunes incluyen abortos espontáneos, fatiga, anorexia, convulsiones, desmayos y neurobrucelosis, que pueden provocar desorientación y varamientos. Otros síntomas en los delfines de los océanos Pacífico y Atlántico incluyen abscesos subcutáneos, endometritis, meningoencefalitis y discoespondilitis. Los estudios de patología post mortem en cetáceos también encuentran lesiones inflamatorias, nódulos de tejidos de granulación y necrosis en el corazón, pulmones y órganos reproductores. Además de esto, es común encontrar lesiones no letales en los huesos y articulaciones, lo que indica una presencia crónica de B. ceti en poblaciones de cetáceos. Solo una pequeña parte de los individuos infectados exhibe signos clínicos o patológicos externos.

Diagnóstico

La mayoría de los casos de B. ceti se han aislado de cetáceos varados o muertos encontrados en las costas. Las pruebas de diagnóstico implican aislar la bacteria y luego completar métodos de identificación directa para caracterizar el microorganismo o pruebas de detección indirectas para encontrar anticuerpos mediante pruebas serológicas. En la mayoría de los casos, B. ceti se detecta mediante amplificación por PCR y secuenciación de ADN.  

Tratamiento

Los delfines cautivos con B. ceti han sido tratados con antibióticos, sin embargo, no se han documentado tratamientos exitosos para la brucelosis en cetáceos.

Transmisión

B. ceti es una bacteria no móvil, incapaz de soportar condiciones extremas fuera de un huésped. Se muestra que se transmite tanto horizontalmente a través del comportamiento social como verticalmente de la madre al feto. Se transmite a través del contacto cercano entre cetáceos a través de las relaciones sexuales, la reproducción y los fetos abortados. B. ceti se ha encontrado en los órganos reproductores y en la leche producida por el huésped. Algunas especies de cetáceos ayudan a otras a dar a luz y las bacterias podrían contraerse de esta manera. La transmisión también podría ocurrir al alimentarse de peces infectados con brucelosis a través de reservorios que tienen la capacidad de replicarse en cetáceos.  

Epidemiología

Se ha encontrado que B. ceti se distribuye en todo el mundo, y el primer caso en el Mediterráneo se documentó en 2012. La brucelosis es una enfermedad zoonótica que tiene muchas cepas diferentes pertenecientes a diferentes especies hospedadoras.

Ha habido cuatro casos confirmados de seres humanos infectados con brucelosis de mamíferos marinos. La brucelosis específica de cetáceos en humanos puede estar subestimada en países africanos, sudamericanos y del sudeste asiático, donde los humanos con frecuencia entran en contacto con cetáceos muertos.  

Historia

Brucella ceti se aisló por primera vez en 1994 cuando se descubrió un feto de delfín abortado. El primer caso de B. ceti que infecta los órganos reproductivos se registró en un acuario de California, donde los delfines mulares sufrieron abortos. La bacteria se aisló tanto del feto como de las placentas.   

Referencias

Otras lecturas

  • Hernández-Mora G, Manire CA, González-Barrientos R, Barquero-Calvo E, Guzmán-Verri C, Staggs L, Thompson R, Chaves-Olarte E, Moreno E (junio de 2009). "Diagnóstico serológico de infecciones por Brucella en odontocetos" . Inmunología clínica y vacunal . 16 (6): 906-15. doi : 10.1128 / CVI.00413-08 . PMC  2691062 . PMID  19386800 .
  • Davison NJ, Barnett JE, Perrett LL, Dawson CE, Perkins MW, Deaville RC, Jepson PD (julio de 2013). "Meningoencefalitis y artritis asociadas a Brucella ceti en un delfín común de pico corto (Delphinus delphis)". Revista de enfermedades de la vida silvestre . 49 (3): 632–6. doi : 10.7589 / 2012-06-165 . PMID  23778612 . S2CID  5221789 .
  • Davison NJ, Perrett LL, Law RJ, Dawson CE, Stubberfield EJ, Monies RJ, Deaville R, Jepson PD (julio de 2011). "Infección por Brucella ceti y altos niveles de bifenilos policlorados en delfines mulares (Tursiops truncatus) varados en el suroeste de Inglaterra". El registro veterinario . 169 (1): 14. doi : 10.1136 / vr.d2714 . PMID  21676987 . S2CID  207041816 .
  • González-Barrientos R, Morales JA, Hernández-Mora G, Barquero-Calvo E, Guzmán-Verri C, Chaves-Olarte E, Moreno E (mayo de 2010). "Patología de los delfines rayados (Stenella coeruleoalba) infectados con Brucella ceti". Revista de patología comparada . 142 (4): 347–52. doi : 10.1016 / j.jcpa.2009.10.017 . hdl : 11056/18359 . PMID  19954790 .

enlaces externos